Ni-Agarose His標簽蛋白純化試劑盒（包涵體蛋白）說明書

6×His-Tagged Protein Purification Kit 

 目錄號：  K0893   

保    存：  蛋白酶抑制劑混合物，-20℃；  其它組分，2-8℃。 

組分說明 

Cat.No.             K0893         K0893A

Volume              2ml            5ml

Ni-Agarose 填料      2ml            5ml

細菌裂解液          25ml           65ml

尿素                145g           365g

1MTris（pH7.9）       ml            15ml

1M  咪唑            25ml           65ml

3M 氯化鈉          50ml          125ml

蛋白酶抑制劑混合物   0.3ml          0.7ml

親和柱空柱           1個(6ml)      1 個 (12ml)

產品簡介

      該鎳柱純化系統(tǒng)對6×His-tag 蛋白具有顯著特異吸附能力，能夠高效一步純化帶有 6 個

組氨酸親和標簽的蛋白。該系統(tǒng)具有4 個Ni2+ 螯合位點，較只有3個螯合位點的Ni-IDA 結合

Ni2+更為牢固，有效防止純化過程中Ni2+脫落且增強對 His 標簽蛋白的結合能力，提高純化

效率。較高的基團密度，大大提高了蛋白載量。該系統(tǒng)在天然或變性條件下，對來 源于各種表

達系統(tǒng)（如桿狀病毒，哺乳細胞，酵母以及細菌）中的His 標簽蛋白，均有很好的純化效果。

本產品已螯合鎳離子，可直接用于包涵體蛋白的純化，使用方便，快捷。支 持 物： CL-6B

瓊脂糖凝膠

載量：20-30mgHis標簽蛋白/ml 填料

粒徑：50-160μm

注意事項 

1. 在純化之前采用電泳檢測蛋白的可溶性，本試劑盒只適合于包涵體蛋白的純化，如需純化

可溶性蛋白，請選擇我公司的可溶性蛋白純化試劑盒，貨號為K0009

2. 緩沖液中不建議使用 β-巰基乙醇、 DTT 和  EDTA。

3. 整個純化過程中切忌凝膠脫水變干。

4. 為提高純化效率，首先確定BindingBuffer 和  ElutionBuffer 中咪唑的+*佳使用濃度。必

要時可以使用線性或梯度濃度的咪唑（10-500mM）洗脫蛋白，并通過SDS-PAGE 或

WesternBlotting 來檢測目的蛋白的純度。

5. 請使用高純度的試劑配制緩沖液，并通過0.22µm 或者0.45µm 過濾器過濾。為避免柱子被

堵塞，建議將裂解液進行離心，或者使用0.22µm 或者0.45µm 過濾器過濾。

6. 柱再生時，保證每步洗完后都要用足夠的去離子水沖洗至中性。

7. 如果有些蛋白采用尿素的溶解效果不好，可以采用鹽酸胍進行溶解。

操作步驟 

組裝層析柱 

  1. 將填料混勻后加入層析柱，室溫靜置10 分鐘，待凝膠與溶液分層后，把底部的出液口打開，讓乙醇通過重力作用緩慢流出。

注意：（1）填料的上層是乙醇保護層，將填料和乙醇一起混勻，以每ml填料純化20-30mgHis

標簽蛋白計算，取需要的體積的填料與乙醇的混合液加入層析柱。

（2）如果乙醇不流出，可以給柱子一個外力，例如用大拇指對柱口輕輕按壓一下，迫使乙醇流出。

（3）本實驗都是通過重力作用使溶液流出。

  2. 向裝填好的柱中加入5 倍柱體積的去離子水將乙醇沖洗干凈后，再用8 倍柱體積的

Binding Buffer平衡柱子，平衡結束后即可上樣。

注意：柱體積指的是填料的體積。

包涵體蛋白的純化（BindingBuffer和ElutionBuffer配方詳見附表2） 

1.  收集菌體后，每100mg菌體（濕重）加入2 ml細菌裂解液（每1ml 細菌裂解液中請預先加

入10μl 蛋白酶抑制劑混合物），如有需要可以超聲裂解菌體。

注意：（1） 當提取物粘度高或提取蛋白為包涵體時，建議加入DNaseI和Lysozyme。每1ml

細菌裂解液中加入1μlDNaseI（1,000U/ml），2μlLysozyme（50mg/ml），DNaseI和

Lysozyme可單獨從我公司購買，貨號：Lysozyme(#YJ0887)、 DNaseI(#YJ2090A)，如使用其

它公司產品，請按照相應說明書操作。

（2）超聲過程中保持菌液處于冰浴中，超聲條件依賴于所使用的超聲儀功率，探頭種類，容器

的大小形狀，需實驗中自己摸索，應避免連續(xù)超聲導致的大量產熱，可分成短時間，多次超

聲，通過一定的間隔時間避免溶液過熱。終以菌液變清即可。

2.   10000×g，4℃離心15分鐘，分離上清和沉淀，并收集沉淀。

3.   將沉淀重懸于Binding Buffer中，盡量混勻使包涵體充分溶解。

4.   10,000×g離心20分鐘，收集上清。

     注意：建議將離心后的上清以孔徑為0.22µm或者0.45 μm的濾膜過濾。

5.   將上清負載上柱，流速為10倍柱體積/小時，收集流穿液。

     注意：（1）本試劑盒中附帶有一塊篩板，使用時先將篩板加至填料的上層，再將處理好

的上清負載上柱。該篩板可用于雜質較多的蛋白的過濾，防止過多的雜蛋白堵塞柱子，但是篩

板放入柱子后不易取出。

（2）通過控制加入的上清（菌體裂解液）的速度來控制流速。

6.   使用15倍柱體積的Binding Buffer沖洗柱子，洗去雜蛋白。

7.   使用適量Elution Buffer洗脫，收集洗脫峰。

注意：通過蛋白監(jiān)測儀監(jiān)測，洗脫峰可以分管收集，每1ml收集1管。

8.    洗脫后，依次使用5倍柱體積的Binding Buffer，5倍柱體積的去離子水洗滌柱子，再用3倍

柱體積的20%乙醇平衡（乙醇要將填料浸沒），4℃保存。 

       注意：（1）在純化包涵體蛋白時，所有緩沖液均含有變性劑，可以降低BindingBuffer中的咪唑濃度（比5mM更低）。洗脫時，若蛋白在較高pH下洗脫失敗，可以選用低pH緩沖液作

為洗脫緩沖液（pH6.5，pH5.9或pH4.5）。 

（2）如果是分段梯度洗脫，大洗脫緩沖液中咪唑濃度未達到500mM，則使用濃度為500mM

的咪唑進行洗脫10倍柱體積后，再進行第8步的操作。

柱再生 

   當填料使用多次后，結合效率會有所下降（表現為流速變慢或填料失去藍綠色），可以用以

下方法再生，提高填料的使用壽命和蛋白質的結合效率。

 1. 使用2 倍柱體積的6M  鹽酸胍沖洗后，使用3 倍柱體積的去離子水沖洗。

 2. 使用1 倍柱體積2% SDS沖洗。

 3. 依次使用1 倍柱體積的25%、50%、75%和5 倍柱體積100%乙醇沖洗，再依次使用 1 倍柱

體積的75%、50%、25%的乙醇沖洗。

 4. 使用1 倍柱體積的去離子水沖洗。

 5. 使用5 倍柱體積含      50 mM EDTA 緩沖液（PH8.0）沖洗。

 6. 使用3 倍柱體積去離子水，3 倍柱體積20%乙醇沖洗。

 7. 4°C 保存。

 8. 再次使用前，需首先使用10 倍柱體積去離子水沖洗，然后使用5 個柱體積的50 mM NiSO4

再生，3 個柱體積的Binding Buffer   平衡。

1: 蛋白分子量標準  

（分子量由大到小分別為：90/66/45/35/27/20kDa）

2: 全菌裂解液

3: 流穿收集液

4: 洗脫收集液

 附表 

    

                                         附表  1. 包涵體蛋白純化緩沖液配方

成分         Tris-HCl（PH7.9）   咪唑       NaCl      尿素

BindingBuffer      20mM          5mM       0.5M      8M

ElutionBuffer      20mM          500mM      0.5M      8M

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